盐碱胁迫下玉米EST数据库对比分析

计划（编号：1201023B）；南通大学校级课题（编号：2012002）；南通大学博士启动基金（编号：03080519、03080227）。

作者简介：周鸣鸣（1977—），男，江苏南通人，博士，副教授，主要从事植物分子遗传学研究。E-mail：13912293932@163.com。

通信作者：张洁，博士，副教授，主要从事分子遗传学研究。E-mail：zmm7711@163.com。

玉米（Zea mays L.）既是重要的粮食和饲料作物，又是重要的工业原料。目前我国是玉米生产第二大国，仅次于美国，但随着玉米深加工等新兴玉米工业的兴起，市场上玉米供求的矛盾日益加剧，提高玉米的综合生产力已经成为一项紧迫的任务。玉米是对盐碱中度敏感的作物，只能在0.3% NaCl以下的土壤上生长，这极大地限制了玉米在盐碱滩地上的生长[1]。据统计，目前世界上有100多个国家存在不同类型的盐碱地，面积达1亿hm2，约占全球耕地面积的10%；其中我国有 0.26 亿 hm2的盐碱地[2]。在盐碱地种植玉米会导致严重减产甚至绝产，通过土壤改良等手段解决盐碱地问题进展缓慢，迫切需要提高品种耐盐碱程度。但玉米耐盐碱种质缺乏，采用常规育种方式选育高耐盐碱玉米新品种十分困难。

鹽碱土是在特定自然环境和人为活动因素综合影响下，盐类直接参与土壤形成过程，并以盐（碱）化过程为主导而形成的，具有盐化层或碱化层，其中含有大量可溶盐类，从而抑制植物正常生长的土壤。盐碱土包括盐土、碱土两大类型。盐和碱胁迫同属水分渗透胁迫，其主要的生理变化机制是一致的[3]。本研究分析了在正常和盐、碱共胁迫下生长的玉米品系YQ7-96在3叶1心期（苗期20 cm左右）的EST数据库，并对其EST进行了初步分析，旨在找出玉米主栽高产品种分子育种基因标记探针。

1材料和方法

1.1材料

玉米品系YQ7-96。

1.2方法

1.2.1玉米处理和收集玉米种子催芽后待根长2～3 cm时，点种于营养盘中，Hoagland 营养液培养，置于网室。处理组在3叶1心期，每盆浇5 L的含100 mmol/L混合盐（50 mmol/L NaCl，50 mmol/L Na2SO4） 的Hoagland液作为盐胁迫处理组和25 mmol/L NaHCO3及 25 mmol/L Na2CO3 的Hoagland液（pH值11，水势为-0.7 MPa） 作为碱共胁迫处理。处理7 d后，分别采集玉米的茎叶混合组织，立即用液氮冷冻后保存于-80 ℃备用。

1.2.2mRNA的纯化参照文献[4]提取RNA。采用FastTrack2.0 Kit （Invitrogen） 试剂盒，并按其操作说明从总RNA中提取mRNA。

1.2.3EST文库构建用CreatorTM SMART cDNA Library Construction Kit（ CLONTEECH） 试剂盒并按操作说明进行。

1.2.3EST文库克隆片段长度筛选PCR 引物1（5′-AACAGCTATGACCATG-3′）；引物2（5′-GTAAAACGACGGCCAGT-3′），反应条件：96 ℃变性10 min，94 ℃ 35 s，52 ℃ 1 min，72 ℃ 1.5 min，30 个循环，72 ℃ 10 min[4]。

1.2.4[JP3]EST序列分析与注释同源性比较参数的得分（score）与匹配碱基数和同源性相关EST的组装分析按照文献[4]方法进行，用http：//www.ncbinlm.nih.gov/blastX/和MIPS网站提供的各种生物信息学在线分析工具对EST进行在线比对。

2结果与分析

2.1EST数据分析

对盐和碱胁迫2个CDNA文库各2 000个克隆进行了的5′端测序。经过校正，4 000条序列中符合要求的（测序中N的比例<5%，外源长度>150 bp，且是非线粒体，非rRNA序列）共有3 802条EST序列，占总测序数量的 95.0%。符合要求的EST序列从文本格式转换为通用的FASTA格式。再利用vector_screen软件扫描去除有效序列载体上的序列，同时屏蔽序列上所有的Poly（A）。“清洁”后的序列进行序列组装分析，3 802条EST中有注释信息的共有3 217条（84.6%），无注释信息的共有585条（15.4%）（表1）。

2.2BlastX注释

2个EST数据库中，已有注释信息的 3 217 条EST序列共产生2 167条被MIPS系统归类的信息（表2），其中参与新陈代谢、蛋白质合成加工和亚细胞水平定位的基因所占比例最高，分别达到50.63%（盐胁迫）和 52.79%（碱胁迫），这3类基因表达的蛋白为维持正常生理活动所必需；细胞内运输、细胞内信号传导、细胞防御、细胞循环和DNA代谢过程的基因所占比例也较高，分别为 22.05%（盐胁迫）、19.03%（碱胁迫）。这部分基因的高丰度表达可能与玉米抗逆反应有关，同时也表明植物抗逆反应涉及到复杂的信号转导；参与能量代谢和转录相关的基因比例分别为 15.77%（鹽胁迫）、15.36%（碱胁迫）。参与细胞发育、细胞分化和细胞构成组分相关的基因含量相对最低，2个EST数据库各项均不超过2.1%；1.36%（盐胁迫）和1.05%（碱胁迫）的虽有同源的蛋白，但是无法归于以上的各类。另外，盐和碱胁迫的EST数据库除了在蛋白合成和蛋白质加工（折叠、修饰和定位）2项上占比差异较大，总体上被MIPS系统归类的比例信息是比较接近的。

3讨论

植物应对盐碱胁迫是一个非常复杂的过程，包括阻止新陈代谢过程、光合速率降低、生长缓慢或停滞，提高或激发胁迫诱导基因的表达、氧化酶活性的提高、ABA含量迅速增高、渗透调节物质和其他保护性物质的积累、抑制能量消耗途径等[5]。在长期的进化过程中，植物能够在适应一种逆境的同时提高对其他逆境胁迫的抵抗力，此即植物的交叉适应（cross-adaption）[6]。植物对逆境的交叉适应具有普遍性，已有研究表明，植物对逆境的适应可能存在共同的机制，盐和碱胁迫同属水分渗透胁迫，其主要的生理变化机制是与干旱胁迫存在相似的机理[7]，但抗胁迫的代谢途径和相关基因也不尽相同[8]。玉米表达基因EST研究中，MGDP曾经组织了24个单位和实验室，构建了不同玉米品种、株系器官组织的24个不同的EST文库，这些EST文库大致可分为以下几类：正常生长组织、盐胁迫、突变株和病菌侵染组织的EST文库，测序分析发现了大量新的表达基因（http：//www.zmdb.iastate.edu/zmdb/EST/libraries.html）。

如同其他植物一样，玉米可能遭受的逆境多种多样，且常常是多因子的综合作用，其中干旱和盐碱是影响玉米产量和品质最大的非生物逆境胁迫因子。玉米在苗期的耐盐碱性很重要，因为植株苗期的生长情况影响其最终的产量。本试验是在借鉴前人耐盐碱性鉴定方法的基础上对玉米耐盐碱性鉴定的方法进行研究。在玉米对盐碱胁迫最敏感的3叶1心期进行盐碱胁迫处理7 d。因此，本研究构建的是对盐碱敏感的生长关键时期3叶1心期混合组织的表达基因的EST数据库，测序分析部分EST的信息表明该文库中包含有大量（所分析EST中的52.00%）未知功能基因的EST。由于该文库是盐和碱胁迫处理下的玉米混合组织的表达基因EST文库，包括了在玉米耐受盐碱关键的生长时期，在盐和碱胁迫生长条件下的所有特异表达基因，将会对公共数据库中现存的玉米EST数据起到补充作用。

在本试验过程中，玉米盐碱处理浓度是获得相关基因表达的重要因素，因此耐盐碱性浓度的确定是构建耐盐碱性CDNA文库的关键。目前，国内外对玉米耐盐碱性鉴定还没有形成统一的、权威的耐盐碱鉴定浓度，大部分的研究者是根据自身的鉴定方法、处理溶液选取不同的鉴定浓度，而且在操作[CM（25]过程中的误差或人为因素都有可能造成鉴定浓度的不同。[CM）]

所以，本试验中对耐盐碱性鉴定浓度的筛选是很必要的。本研究最终确定的玉米苗期盐性处理浓度为100 mmol/L，确定的玉米苗期碱处理浓度为35 mmol/L；刘芳等研究表明 250 mmol/L NaCl是玉米苗期耐盐性筛选的理想浓度[9]，崔美燕的研究表明 25 mmol/L Na2CO3可以作为玉米苗期耐碱性鉴定的理想浓度[10]。本试验中使用的耐盐碱胁迫浓度与其他人的研究存在一定差异，并使用较重的胁迫参数，这样更有利于获得相关的EST表达。此外，研究人员曾采用苗情评价的方法对玉米自交系幼苗进行耐盐碱性鉴定，根据盐或碱胁迫处理7 d后苗情观察来评价玉米材料的耐盐碱性状，非常直观、简单[10-11]。本试验中也是收集7 d的玉米混合组织作为抽提RNA的材料。

本研究提取处理玉米品系YQ7-96的3叶1心期的茎叶混合组织的总RNA，运用SMART技术构建pDNR-LIB载体的cDNA文库，在成功构建了盐和碱胁迫的玉米cDNA文库的基础上，对产生的EST进行了测序和分析归类，筛选出细胞功能相关EST，为后续研究提供了基础数据。

[HS2*2][HT8.5H]参考文献：[HT8.SS]

[1][ZK（#]江香梅，黄敏仁，王明庥. 植物抗盐碱、耐干旱基因工程研究进展[J]. 南京林业大学学报：自然科学版，2001，25（5）：57-62.

[2]王宁. 不同玉米品种苗期对盐胁迫的生物学响应及耐性机制研究[D]. 沈阳：沈阳农业大学，2009.

[3]Munns R，Tester M. Mechanisms of salinity tolerance[J]. Annual Review of Plant Biology，2008，59：651-681.

[4]张洁，焦岳宏，陆海峰，等. 玉米混合组织的EST文库的构建和部分EST序列的分析[J]. 广西农业生物科学，2004，23（3）：243-248.

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[6]王翠亭，沈银柱，黄占景. 高等植物中的逆激蛋白及交叉适应综述[J]. 保定师专学报，1999，12（4）：34-37.

[7]彭立新，李德全，束怀瑞. 植物在渗透胁迫下的渗透调节作用[J]. 天津农业科学，2002（8）：38-43.

[8]Morgan M J. Osmoregulation and water stress in higher plants[J]. Annual Review of Plant Biology，1984，35：299-391.

[9]刘芳，付艳，高树仁，等. 玉米幼苗的盐胁迫反应及玉米耐盐性的鉴定[J]. 黑龙江八一农垦大学学报，2007，19（6）：22-26.

[10][ZK（#]崔美燕. 玉米苗期耐碱种质资源评价及盐碱条件下部分性状遗传分析[D]. 大庆：黑龙江八一农垦大学，2009.

[11]付艳，高树仁，王振华. 玉米种质苗期耐盐性的评价[J]. 玉米科学，2009，17（1）：36-39，50.

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