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根癌农杆菌介导的玉米萌动胚NPR1基因遗传转化

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摘要:以玉米萌动胚为外植体,研究了影响根癌农杆菌介导的玉米NPR1基因遗传转化的若干因素。结果表明,在感染液和共培养基中分别都加入100 μmol/L乙酰丁香酮,根癌农杆菌LBA4404的菌液,浸染时间12 h,40 mg/L潮霉素进行转化苗筛选,为转化的适宜条件。对转化苗进行PCR检测,证明外源目的基因已整合到玉米基因组中。

关键词:玉米;根癌农杆菌介导;遗传转化;NPR1基因;萌动胚

中图分类号:S513;Q78文献标识码:A文章编号:0439-8114(2011)14-2985-03

Genetic Transformation of NPR1 Gene to Germinating Embryo of Maize by Agrobacterium tumefaciens

QIN Xin-min,ZENG De-long,LI Hui-min,QIN Ping-sheng

(College of Life Science,Guangxi Normal University,Guilin 541004,Guangxi,China)

Abstract: Using germinating embryo of maize as explants, several factors affecting the Agrobacterium-mediated genetic transformation were studied. The results showed that good transformation efficiency could be obtained if the inclusion of acetosyringone in both infection medium and co-cultivation medium was 100 μmol/L; OD600nm of LBA4404 fermenting liquorwas 0.6; infection time was 12 h; and co-culture for 16 h at 26 ℃, use 40 mg/L of hygromycin for screening transformed plants. PCR test indicated that the NPR1 gene had been transferred into maize genome.

Key words: maize; Agrobacterium-mediated; genetic transformation; NPR1 gene; germinating embryo

玉米是世界重要的粮食作物之一,栽培面积仅次于小麦和水稻居第三位,但产量却居世界第一。在玉米栽培过程中病害严重,如大小斑病、青枯病、病毒病、锈病等严重影响玉米的产量和品质。因此,生产上亟需优良抗病的玉米品种。转基因技术是培育抗病、高产、优质品种的有效途径之一。

NPR1基因是植物系统获得性抗性中的一个关键基因,它可调控植物的广谱性抗性的发生,在植物系统性抗病中起着关键的作用[1]。NPR1基因的表达可导致下游抗病基因的一系列反应,从而赋予植株对细菌病原体和真菌病原体的抗性,即使NPR1基因过量表达也只是提高了植物的抗病性,并无其他的不良反应[2]。NPR1基因功能是通过将克隆的野生型NPR1基因转化到拟南芥NPR1基因突变体中,恢复了突变体抵抗Pseudomonas syringae和Phytophthora parasitica的能力[3]来证实的。Chern等[4]在通过让水稻过量表达拟南芥NPR1基因的实验来确定NPR1基因在单子叶植物中所扮演的角色时,发现转基因水稻植株表现出对Xoo(一种水稻细菌性枯叶病原体)的抗性提高,首次证明了NPR1基因可以提高单子叶植物的抗病性。因此,NPR1基因作为植物广谱抗病性基因日渐受到人们的关注。

利用构建的NPR1基因表达载体,采用根癌农杆菌介导方法,以玉米成熟萌动胚为转化受体,建立了根癌农杆菌介导玉米萌动胚的遗传转化体系,获得了转基因植株。经分子检测证明外源NPR1抗病基因已整合进转基因玉米的基因组中。

材料与方法

1.1材料

根癌农杆菌为LBA4404,所用的植物表达载体为pCaMVNPR(带有NPR1基因和选择性标记潮霉素磷酸转移酶基因[5])。实验材料为玉米自交系7239。

1.2方法

1.2.1种子处理参照王昌涛等人的方法[6]并稍加改进。玉米种子用自来水冲洗干净,将种子浸泡在无菌水中,置于37 ℃、4~5 h,用体积分数为70%的酒精浸泡种子1 min,1 g/L升汞消毒8 min,无菌水冲洗4次,超净台上用解剖刀在玉米胚上纵向划开1~3 mm深的口子,然后将种子浸泡在无菌水中。

1.2.2根癌农杆菌介导的转化与抗性植株的筛选

1)感染液制备。平板上挑根癌农杆菌单菌落接种于5 mL YEB培养液中(含50 mg/L利福平,25 mg/L潮霉素),28 ℃、200 r/min振荡培养过夜。离心收集菌体,加入50 mL新鲜YEB液体培养基(含100 μmol/L乙酰丁香酮)继续振荡培养至对数生长期。

2)浸染转化。将准备好的玉米萌动胚放入上述根癌农杆菌液中,28 ℃、200 r/min继续振荡12~24 h,然后把种子放在MS固体培养基上,黑暗共培养3 d。

3)抗性苗的筛选。将共培养后的玉米种子在超净台上用无菌水冲洗4次,将大部分根癌农杆菌除去,再转入带有潮霉素的筛选培养基中进行萌发筛选。

4)抗性苗的移栽。7~10 d后将根系发达、生长正常的绿苗取出,用自来水将根系上的培养基冲洗干净,移栽到通气、保水良好的基质中,用薄膜遮盖,注意保湿,防止小苗过度失水。

1.2.3转基因植株的分子检测从生长到1 m高左右的抗性植株和未转化对照植株取叶片,用CTAB法[7]提取总DNA作为模板进行PCR扩增。PCR引物P1和P2由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。P1:5′-AGTTGATAAGGTCTCTTCGTTGAT

TAGCAG-3′;P2:5′-GGTACAGCAAAAATTACACTA

AGAGGCAAG-3′。

30 μL PCR反应体系:模板DNA 30 ng,上下游引物各0.5 μmol,4种dNTP各100 μmol,10×Buffer 3 μL,Taq酶2.5 U。反应程序为95 ℃预变性5 min;94 ℃变性30 s、55 ℃退火30 s、72 ℃延伸3 min,35个循环;72 ℃延伸10 min。PCR反应产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,EB染色后观察扩增结果并照相。

2结果与分析

2.1影响根癌农杆菌转化玉米萌动胚的因素

2.1.1消毒时间对种子萌发的影响采用1 g/L升汞,比较了6、8、10、12 min消毒时间对种子萌发的影响。结果发现消毒时间8 min较为适宜(基本没有污染,萌发率在85%以上),低于8 min,玉米种子在随后的实验中,污染率较高。高于8 min,随着消毒时间的延长,种子的萌发率会明显下降,12 min萌发率仅为60%左右。可能是玉米种子经过37 ℃水浴4~5 h后已经开始萌发,对消毒剂比较敏感所致。

2.1.2潮霉素筛选浓度的确定实验使用的植物表达载体pCaMVNPR的T-DNA区含有潮霉素磷酸转移酶基因,因此用不同浓度潮霉素进行了抗性筛选实验。潮霉素浓度太低容易出现假阳性植株,过高则影响植物正常生长发育。分别选择含有0、25、50、75、100、125 mg/L潮霉素的MS培养基,每种培养基中接种100粒玉米种子,进行浓度梯度实验,重复3次。从表1可以看出,当潮霉素浓度高于50 mg/L时,基本上玉米种子都丧失了发芽能力,选择了40 mg/L作为抗性筛选浓度,这样既可避免假阳性植株的再生,又可使抗性植株正常生长(图1)。

2.1.3浸染时间对转化率的影响分别采用4、8、12、16、24 h浸染玉米萌动胚,经共培养和抗性筛选后统计抗性植株数。从表2可以看出浸染时间是影响抗性植株数即转化率的一个重要因素。浸染时间过长过短都不利于萌动胚的转化,浸染12 h转化率最高(表2)。

2.1.4乙酰丁香酮对转化率的影响设计了4个处理:①不加乙酰丁香酮的对照组,②在根癌农杆菌浸染液培育中加入100 μmol/L乙酰丁香酮,③在共培养阶段加入100 μmol/L乙酰丁香酮,④在根癌农杆菌浸染液和共培养基中都加100 μmol/L乙酰丁香酮。实验结果表明,添加100 μmol/L乙酰丁香酮可以提高转化率,在菌液和共培养基中都加入乙酰丁香酮对提高转化率效果最好(表3)。

研究共转化玉米萌动胚3 200个,获得抗性植株62株,移栽后成活42株(图3),经潮霉素筛选获得的抗性苗移栽种植高达1 m左右时,取其新叶提取DNA进行PCR检测,PCR检测结果表明42株抗性苗中16株为阳性植株,PCR阳性植株率约为38.1%。现有16株阳性植株已经结实,其Southern blot、Northern blot等分子检测有待进行。

3讨论

根癌农杆菌作为自然界中存在的天然基因工程载体,具有操作方便、费用低廉、可插入片段大的外源基因、不易发生重排、拷贝数低且符合孟德尔遗传规律等优点。但由于单子叶植物对根癌农杆菌不敏感,所以根癌农杆菌介导的遗传转化主要运用于双子叶植物。自1994年Hiei利用根癌农杆菌介导的方法[8]、1996年Ishida[9]、以及1997年Cheng[10]对水稻、玉米和小麦的转化成功后,国内外学者对根癌农杆菌介导的玉米遗传转化进行了大量的研究,并且取得了明显的进展[11-14]。

在转化的受体系统方面,除了胚性愈伤组织外,成熟胚、茎尖、子房及花粉等都有成功的报道。各种受体系统都具有各自的特点,如胚性愈伤组织数量多,而且处于分生细胞状态,易于接受外源基因,转化率也较高。但再生植株嵌合现象严重。研究采用玉米成熟种子,使其处于萌发状态以作受体,它具有实验操作相对简单、对实验条件要求不是很高、不依赖组织培养技术、能够较快得到转基因植株、并且不受季节的限制等优点。其转化原理可能是萌动的种胚对外界因子的作用十分敏感,胚性细胞开始处于分裂状态,子叶对胚芽的包裹不再严密。此时利用高活力的根癌农杆菌浸染,将有利于对种胚生长点的转化。加上对萌动种胚的切割处理,为根癌农杆菌进入种子,与生长点细胞接触提供了通道,有利于转化的实现[6]。

利用种子萌动胚为外植体进行遗传转化,获得转基因植株的方法虽然有其优点,但与其他受体系统进行根癌农杆菌介导的转化方法一样,转化率也受到根癌农杆菌活化、浸染时间、共培养条件等多种因素的影响。因此,今后需要开展更深入的研究,以进一步提高转化率。

参考文献:

[1] CAO H,BOWLING S A,GORDON A S,et al. Characterization of an Arabidopsismutant that is nonresponsive to inducers of systemic acquired resistance[J]. Plant Cell,1994,6(11):1583-1592.

[2] CAO H,LI X,DONG X. Generation of broad-spectrum disease resistance by overexpression of an essential regulatory gene in systemic acquiredresistance[J]. Proc Natl Acad Sci (USA),1998,95(11):6531-6536.

[3] CAO H,GLAZEBROOK J,CLARKE J D,et al. The Arabidopsis NPR1 gene that controls systemic acquired resistance encodes a novel protein containing ankyrin repeats[J]. Cell,1997,

88(1):57-63.

[4] CHERN M S,FITZGERALD H,YADAY R C,et al. A disease resistance pathway in rice similar to the NPR1-mediated pathway in Arabidopsis[J]. Plant J,2001,27(2):101-113.

[5] 秦新民,李文兰,张丽珍,等. 拟南芥NPR1基因的克隆与表达载体的构建[J].广西植物,2005,25(1):58-61.

[6] 王昌涛,赵玉锦,李坤远,等. 农杆菌介导玉米萌动胚遗传转化新体系的建立[J].华北农学报,2007,22(5):110-113.

[7] 奥斯伯 F,布伦特 R,金斯顿 R E. 精编分子生物学实验指南[M]. 马学军,舒跃龙,译.北京:科学出版社,2005.

[8] HIEI Y,OHTA S,KOMARI T,et al. Efficient transformation of rice(Oryza sativa L.) mediated by Agrobacterium and sequence analysis of the boundaries of the T-DNA [J]. The Plant Journal,1994,6(2):271-282.

[9] ISHIDA Y,SAITO H,OHTA S,et al. High efficiency transformation of maize (Zea mays L.) mediated by Agrobacterium tumefaciens[J]. Nature Biotecnology,1996,14:745-750.

[10] CHENG M,FRY J E,PANG S,et al. Genetic transformation of wheat mediated by Agrobacterium tumefaciens[J]. Plant Physiol,1997,115(3):971-980.

[11] GRIMSLEY N,HOHN T,DAVIES J W,et al. Agrobacterium-mediated delivery of infectious maize streak virus into maize plants[J]. Nature,1987,325:1977-1979.

[12] COULD I,DEVEY M,HASEGAWA O,et al. Transformation of Zea may L. using Agrobacterium tumefaciens and the shoot apex[J].Plant Physiol,1991,95(2):426-434.

[13] 黄璐,卫志明. 农杆菌介导的玉米遗传转化[J]. 实验生物学报,1999,32(4):381-389.

[14] 李国圣,杨爱芳,张举仁. 玉米愈伤组织的遗传转化及抗除草剂植株再生[J].科学通报,2000,45(20):2181-2184.

注:本文中所涉及到的图表、注解、公式等内容请以PDF格式阅读原文

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