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中药复方冠心康对大鼠缺血再灌注损伤心肌细胞Bcl2、Bax表达的影响

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摘要:目的 观察中药复方冠心康对大鼠缺血再灌注损伤(MIRI)心肌细胞相关凋亡因子Bcl2、Bax表达的影响。方法 40只SD雄性大鼠随机分为假手术组、MIRI模型组、冠心康组、盐酸地尔硫卓组。采用结扎左冠状动脉前降支30 min,再灌注2 h复制大鼠MIRI模型,分别以HE染色、TUNEL法及免疫组织化学法检测心肌组织病理学、心肌细胞凋亡指数、心肌细胞Bcl2、Bax的阳性表达。结果 MIRI组与假手术组比较心肌细胞凋亡指数值显著升高(P<0.01),而冠心康组明显降低(P<0.01);抑凋亡因子Bcl2在MIRI后表达明显降低,而促凋亡因子Bax表达则明显升高,冠心康可明显升高Bcl2的表达,同时降低Bax的表达(P<0.01)。结论 中药复方冠心康对大鼠MIRI心肌细胞具有明显的保护作用,其作用机制与调控心肌细胞的凋亡因子Bcl2、Bax的表达有关。

关键词:冠心康;缺血再灌注损伤;细胞凋亡;Bcl2;Bax

中图分类号:R329.2 R285.5文献标识码:A文章编号:1672

1) 为上海市卫生局基金资助项目(No.2010214) 随着人口老龄化,冠心病的发病率和死亡率逐年增高,虽然通过溶栓、经皮冠状动脉介入治疗术等各种心肌保护技术,降低了死亡率,但心肌缺血再灌注损伤(myocardial ischemia reperfusion injury,MIRI)仍无法完全避免。而心肌细胞凋亡是多种心血管疾病发生发展中重要的细胞学基础,大量研究表明,在众多心脏疾病中如心力衰竭、心律失常、心肌病、心肌梗死等都有心肌细胞凋亡的发生[1]。大量的动物实验研究发现,心肌细胞凋亡与MIRI有着密切关系,且凋亡在心肌细胞再灌注过程中起着关键作用[2]。中药复方冠心康具有抗心肌缺血和缓解心绞痛的作用[3],并能显著缩短豚鼠模拟缺血早期和再灌注早期心肌90%动作电位时程[4],在此研究基础上,本实验采用大鼠MIRI模型,观察中药复方冠心康对大鼠MIRI心肌细胞凋亡因子Bcl2、Bax表达的影响,并探讨其作用机制。

1 材料与方法

1.1 实验动物 SPF级SD雄性大鼠,体重200 g~250 g,共40只,购于上海斯莱克实验动物有限公司,动物许可证号SYXK(沪)20100095。所有动物饲养于上海中医药大学附属龙华医院SPF级动物实验中心。

1.2 实验药物 冠心康由黄芪、全瓜蒌、薤白、益母草、丹参、制半夏组成,均购于上海中医药大学附属龙华医院药剂科,并煎成汤剂。盐酸地尔硫卓片(恬尔心),浙江亚太药业股份有限公司生产,产品批号20110303。

1.3 主要试剂 Bcl2、Bax多克隆抗体为美国Santa Cruz公司产品, EnVision试剂(HRP/Rabbit) 即用型丹麦Dako公司产品,Tunel试剂盒、苏木素伊红均购自南京建成科技有限公司,3%戊巴比妥钠、10%甲醛溶液等均为上海威奥生物科技有限公司提供。

1.4 主要仪器 小动物呼吸机:上海奥尔科特技术有限公司;多导电生理仪:PowerLab生物信号采集分析系统为澳大利亚埃德仪器国际贸易有限公司产品;切片机:德国Lico公司产品,型号:RM2145;微波炉:格兰仕WD800SL4Ⅱ;隔水式恒温培养箱:GNP9270上海精宏实验设备有限公司;电热恒温水浴锅:DKS22上海精宏实验设备有限公司。

1.5 实验分组 随机分为4组:假手术组、MIRI模型组、冠心康组、盐酸地尔硫卓组。

1.6 给药时间和方法 术前灌胃7 d,每日灌胃1次。冠心康按生药13 g/(kg·d)灌胃给药。盐酸地尔硫卓按30 g/(kg·d)灌胃给药。假手术组和MIRI模型组分别于相同时间给予等容积的生理盐水灌胃。

1.7 动物模型的建立及评价 于末次给药1 h后,通过结扎大鼠左冠状动脉前降支30 min,再灌注2 h,制备大鼠MIRI模型,以往已有实验证实此缺血再灌注时间足以引起心肌细胞凋亡[5,6]。

将大鼠称重量,3%戊巴比妥钠,0.15 mL/100 g,经腹腔注射麻醉后,仰卧固定。气管插管,连接小动物呼吸机,呼吸频率70次/min~80次/min,潮气量8 mL~12 mL,呼吸气比为1∶2,呼吸压力1.5 kPa~2.5 kPa,同时用多导电生理仪Ⅱ导联记录心电图。胸部脱毛,在心脏搏动最明显处钝性分离肌肉开胸,钝性分离第3、4肋骨间肌肉,用眼科开睑器打开视野,剪开胸膜、心包膜,充分暴露心脏。在左心耳下(相当于肺动脉圆锥与左心耳之间,距主动脉根部2.5 mm~3 mm处),用40带线缝合针线穿过一小束心肌,将硅胶管置于结扎线与血管之间,拉紧结扎线,使硅胶管压迫冠状动脉左前降支而至闭塞,亦便于切断结扎线再通。结扎后左室壁局部变苍白,心电图出现QRS波群变宽大畸形者为结扎成功。缺血30 min后,松解结扎线实现冠脉再灌注。再灌注后,可见左室壁苍白部分逐渐红润,心电图上宽大畸形的QRS波群变窄,波幅下降,提示再灌注成功。假手术组同样手术但不结扎冠脉。

1.8 取材及检测指标 造模成功后,将大鼠处死,剪取心脏,生理盐水冲洗,在MIRI区域取材,作为组织标本。用10%甲醛液固定12 h,梯度酒精脱水,二甲苯透明,石蜡包埋切片,检测指标如下。

1.8.1 心肌组织病理学 切片厚度为4 μm,常规苏木素伊红(HE)染色。

1.8.2 心肌细胞凋亡的原位标记检测 采用TUNEL法并严格按照试剂盒说明书操作。细胞核中有棕黄色颗粒者为阳性细胞,即凋亡细胞。每张切片随机选择5个非重叠视野(400倍),计数阳性染色的心肌细胞数及心肌细胞总数,计算细胞凋亡指数(AI),AI=阳性细胞数/心肌细胞总数×100%。

1.8.3 免疫组化检测Bcl2、Bax的表达 按照EnVision法进行免疫组化检测,简要步骤为:石蜡切片常规脱蜡至水,PBS冲洗3 min×3次,用pH6.0 的0.01 mol/L柠檬酸缓冲液热诱导修复(微波3档,20 min),然后室温自然冷却,PBS冲洗3 min×3次,经0.3%H2O2室温下20 min后,PBS冲洗3 min×3次,后经20%正常羊血清室温孵育30 min,滴加抗Bcl2或Bax 后37 ℃孵育2 h,PBS冲洗3 min×3次,之后用EnVision试剂37 ℃ 30 min,PBS冲洗3 min×3次,DAB显色8 min~12 min,苏木素染色,热水蓝化,在显微镜250倍下用图形分析系统定量观察。

1.9 统计学处理 实验数据以均数±标准差(x±s)表示。数据采用SPSS 18.0统计软件进行分析,用组间t检验。

2 结 果

2.1 心肌组织病理学改变 HE染色(光学显微镜×200倍):假手术组心肌细胞排列整齐,细胞核居中,细胞膜完整,细胞着色均匀;MIRI模型组心肌细胞排列紊乱,部分区域有断裂,细胞核固缩,细胞着色不均匀,区域性水肿变性明显;冠心康组心肌细胞排列基本整齐,细胞着色相对均匀,水肿变性不明显;盐酸地尔硫卓组心肌细胞排列疏松,细胞着色不均匀,水肿变性稍明显。

2.2 心肌细胞凋亡指数 光镜下观察,心肌细胞核呈蓝色,而心肌凋亡阳性细胞的细胞核为深浅不一的棕褐色。结果显示:与假手术组比较,MIRI模型组心肌细胞凋亡指数值显著升高,差异有统计学意义(P<0.01);与MIRI模型组比较,冠心康组和盐酸地尔硫卓组明显降低,差异有统计学意义(P<0.01)。详见表1。

3 讨 论

MIRI可诱导心肌细胞坏死,同时也可导致心肌细胞凋亡。1994年Gottlieb等[7]首先在兔心脏上发现再灌注损伤促进了细胞凋亡。随着分子心脏病学研究的不断深入,越来越多的证据表明细胞凋亡基因的调控在MIRI的病理生理过程中发挥着重要作用。

目前研究的凋亡调控基因主要为Bcl2家族、Caspase家族、细胞色素C、凋亡诱导因子、p53等。其中Bcl2基因家族是心肌细胞凋亡过程中极其重要的调节因子[8]。Bcl2家族蛋白根据其功能主要分为两大类:抑细胞凋亡因子,以Bcl2、BclxL为代表;促细胞凋亡因子,以Bax、Bad、Bak、Bid为代表。Bcl2基因家族成员自身或与Bax彼此之间可形成二聚体或多聚体,通过蛋白蛋白相互作用调节细胞的存活或凋亡。Bcl2蛋白主要定位于线粒体外膜,起抑制凋亡的作用。而具有促凋亡作用的Bax蛋白则主要定位细胞质,当细胞受到凋亡因子的诱导,便向线粒体转位。Bcl2和Bax相互竞争,间接调节蛋白酶和核酸酶活性,从而双相调节细胞凋亡。当Bax表达占优势时促进细胞凋亡,而Bcl2表达占优势时则阻止细胞凋亡,因此有学者将Bcl2和Bax称为心肌细胞的“死亡开关”[9,10]。

冠心病在祖国医学中属于“胸痹”范畴,责之于本虚标实。MIRI是冠心病的一个病理环节,常见临床表现主要为胸痛、胸闷、短气、乏力等。中医病机以气虚痰浊血瘀多见。中药复方冠心康以《金匮要略》中栝楼薤白半夏汤为基础加减化裁而成。全方以黄芪为君,丹参、益母草为臣,补气生血、活血祛瘀;佐以全瓜蒌、薤白、半夏,燥湿化痰、通阳解秽。前期研究发现其具有明显的调脂、抗心肌缺血、缓解心绞痛的作用,深入研究发现本方可进一步开放离体大鼠MIRI心肌KATP通道,可明显增加Ca2+Mg2+ATP酶、Na+K+ATP酶活性,抑制Ca2+超载、减轻Ca2+内流;能够明显促进超氧化物歧化酶(SOD)的产生,有效清除氧自由基作用[11,12]。本实验采用大鼠MIRI模型,发现中药复方冠心康组心肌细胞凋亡指数显著降低,同时,抑凋亡因子Bcl2的表达明显升高,而促凋亡因子Bax的表达则明显降低。

综上所述,中药复方冠心康可明显减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤,其作用机制是通过调控心肌细胞的凋亡基因而发挥保护作用,但是,中药复方的作用机制是多靶点的,是否还通过其他机制起到保护作用,仍需要进一步深入探讨研究。

参考文献:

[1] Richard RN,Douglas LM.Apoptosis and the heart:A decade of progress[J].Mol Cell Cardiol,2005,38(1):12.

[2] Lamendola P,Di Monaco A,Barone L,et al.Mechanisms of myocardial cell protection from ischemia/reperfusion injury and potential clinical implications[J].G Ital Cardiol(Rome),2009,10(1):2836.

[3] 刘萍,章怡祎,张静生.中药复方对损伤人血管内皮细胞表达细胞间黏附分子的影响[J].中国临床康复,2006,10(27):5457.

[4] 韩向晖,张娜,刘萍,冠心康对豚鼠缺血再灌注心室乳头肌电生理特性的影响[J].上海中医药杂志,2009,43(3):5862.

[5] McCully JD,Wakiyama H,Hsieh YJ,et al.Differential contribution of necrosis and apoptosis in myocardial ischemiareperfusion injury[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2004,286(5):H1923H1935.

[6] Das S,Cordis GA,Maulik N,et al.Pharmacological preconditioning with resveratrol:A role of CREBdependent Bcl2 signaling via adenosine A3 receptor activation[J].Am J Physioi Heart Cirl Physiol,2005,288(1):H328H335.

[7] Gottlieb RA,Burleson KO,Kloner RA,et al.Reperfusion injury induces apoptosis in rabbit cardiomyocytes[J].J Clin Invest,1994,94(4):16211628.

[8] Kostyak JC,Hunter JC,Korzick DH.Acute PKCdelta inhibition limits ischemiareperfusion injury in the aged rat heart:Role of GSK3beta[J].Cardiovasc Res,2006,70(2):325334.

[9] Gross ER,Hsu AK,Gross GJ.The JAK/STAT pathway is essential for opioidinduced cardioprotection:JAK2 as a mediator of STAT3,Akt,and GSK3 beta[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2006,291(2):H827H834.

[10] Bao W,Behm DJ,Nerurkar SS.Effects of p38 MAPK inhibitor on angiotensinⅡdependent hypertension,organ damage,and superoxide anion production[J].J Cardiovasc Pharmacol,2007,49(6):362368.

[11] 陈富荣,张娜,刘萍.冠心康对大鼠缺血心肌细胞ATP敏感钾通道亚基Kir6.1、Kir6.2、SUR2A、SUR2B表达的影响[J].中西医结合学报,2010,8(5):458464.

[12] 张娜,陈富荣,章怡祎,等.冠心康对大鼠缺血心肌细胞ATP敏感钾通的影响[J].中国中西医结合杂志,2010,30(11):1186

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